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试剂盒简介：
生物样本RNA 提取试剂盒是基于磁珠法原理提取生物样本核酸，提取原理是利用纳米磁珠对核酸样本具有选择吸附的特性，对混合样本中的核酸有效富集，并通过净化、裂解、漂洗、洗脱步骤，将核酸有效富集纯化；传统的柱式提取方法主要通过柱离心洗脱，一般这种方案提取的RNA抑制物不能有效的全部清除，残留的抑制物会造成R 的降解，本系列试剂盒裂解系统有效灭活RNA 酶，同时自动化提取过程中经过多步漂洗，有效清除抑制物，防止RNA 样本降解。
本公司系列试剂盒提取流程分为两个部分，不同的核酸样本前处理及通用的自动化提取。核酸样本前处理主要针对植物、动物组织等抑制物较多的样本组织，此类样本通过前处理后有效清除抑制物并加入到9 深孔板中，利用本公司全自动核酸提取仪自动化富集纯化核酸。
实验示意图：
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资 源
常见问题
一：RNA样本筛选及储存要点概述
RNA在细胞内极易降解，样本选择时一定要选取新鲜的样本组织或者取样后迅速低温处理（液氮速冻）；样本出现多次反复冻融后，RNA得率会严重下降，也会导致RNA降解；RNA提取环境要保持无RNA酶污染；
二：（RNA)如何处理含有微量EDTA的Buffer EB在（RNA）试剂盒中？
试剂盒中Buffer EB（RNA专用）中含有少量EDTA，可能影响下游实验，使用时适当稀释，如果用其他洗脱液洗脱，要确保PH>7.5，PH过低影响洗脱效率；
三：(RNA)离心柱漂洗完成后操作注意事项
离心柱漂洗完成后，尽可能烘干柱膜上残留乙醇，残留乙醇会影响洗脱效率和下游实验效果；柱膜也不建议过度干燥，没有乙醇味道残留最好，如果过度干燥可能影响RNA溶解；如果A260/230值过低，说明样本提取过程中漂洗不彻底，有盐离子残留，建议增加漂洗次数；
四：RNA提取中A260/280比值分析：低于1.9的情况说明什么？
对于RNA提取，A260/280<1.9说明有可能存在DNA污染或者蛋白污染，如果洗脱样本时没有使用Buffer EB，而使用ddH20（确保无RNA酶），比值或偏低，因为Ph值会影响吸光值，并不表示样本纯度低；
五：如何判断RNA的完整性
RNA完整性可以通过超微量核酸检测仪检测或者琼脂糖凝胶电泳（电泳条件：胶浓度1%；1XTAE电泳缓冲液）来判断；一般样本RNA电泳条带为两条带，对于植物样本，有可能存在叶绿体RNA干扰，条带数量大于4条，并不表示RNA提取发生降解；
六：如何有效防止RNA污染？
RNA容易受到环境污染导致RNA严重降解，建议实验过程中注意更换实验手套，使用所有耗材应该均无RNA酶的一次性耗材；
电泳环境受到RNA酶污染，也会造成RNA降解，电泳检测不准确，确保电泳过程中电泳缓冲液，上样缓冲液无RNA酶污染；
七：植物RNA样本处理量差异的处理方案
对于植物样本，样本处理量无法统一确定，对于一般样本（烟草，拟南芥等），提取量不超过100mg鲜重组织或者20mg干重组织，对于复杂样本（水稻，玉米，榆树等），建议初始样本量不超过50mg鲜重或者10mg干重组织；如果需要较高的RNA量，可以采取多管浓缩的方法提取RNA;
如果离心时堵塞离心柱，建议减少初始样本量；
八：植物RNA样本提取试剂盒选型指南
RNA提取一般是传统TRIzol方法和改进的柱式方法；对于TRIzol法进本可以提取大部分样本RNA，但是对于多糖多酚植物样本，建议使用者尽量选择具有针对性的试剂盒（参见目录），传统TRIzol法无法有效去除多糖多酚这些次生代谢物；
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